背景
mRNA疗法在癌症免疫治疗、疫苗开发等领域展现出广阔前景,但其临床转化长期面临两大核心挑战:一是mRNA分子本身易降解、体内靶向性差;二是现有脂质纳米颗粒(LNP)递送系统主要富集于肝脏,难以实现脾脏等肝外组织的精准递送。脾脏作为人体最大的次级淋巴器官,富含树突状细胞、巨噬细胞等抗原呈递细胞,是启动抗肿瘤免疫应答的理想靶点,然而如何将mRNA高效、安全地递送至脾脏,一直是领域内的技术瓶颈。
期刊 Advanced Composites and Hybrid Materials
IF值 15.5
DOI 10.1007/s42114-026-01689-8
近日,以河北医科大学向柏、王磊团队为主,联合澳门大学欧阳德方等研究者在材料科学领域知名期刊Advanced Composites and Hybrid Materials发表研究,针对mRNA肝外递送与脾脏偏向转染难题,提出“氯喹启发的脾脏靶向系统(chloroquine-inspired spleen-targeting system, CISTS)”。该研究将氯喹样喹啉药效团与可电离脂质设计相融合,通过分子杂交与组合筛选获得一系列新型脂质纳米颗粒,在不额外加入靶向配体或外源免疫佐剂的情况下,实现脾脏偏向性 mRNA 表达、增强内体/溶酶体逃逸,并产生与TLR通路相关的自佐剂效应。
本文所用关键工具mRNA包括EGFP mRNA、OVA mRNA、Fluc mRNA和Cas9mRNA由APExBIO提供。四类mRNA分别用于体外蛋白表达/转染观察、肿瘤抗原疫苗验证、体内生物发光分布以及长片段载荷兼容性评价;其长度从 1.0到4.5 kb范围。对于mRNA-LNP研究,高质量mRNA原料会直接影响包封率、完整性、翻译效率和批间一致性,是关键上游变量之一。

图1. CISTS 的总体设计与抗肿瘤免疫机制示意图
(CIL/LNP 筛选、脾脏偏向性抗原表达及 T 细胞介导的抗肿瘤效应)
核心创新:氯喹启发的分子杂交策略
本研究的核心特色在于从可电离脂质化学结构本身出发,同时调控器官偏向性、胞内递送与免疫刺激。主要创新可概括为:
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创新一:氯喹启发的可电离脂质分子杂交设计。团队采用模块化策略,将喹啉衍生头基、连接臂以及不饱和疏水尾进行组合,合成CIL-A至CIL-E五种氯喹启发脂质,并通过NMR和HRMS进行结构确认。

图2. 氯喹启发脂质CIL-A–E的模块化合成路线
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创新二:以脂质结构为核心实现多功能协同。CISTS仍属于多组分LNP,但其关键功能来自CIL化学结构与配方组合,可在无需额外靶向配体和外源佐剂的条件下同时获得脾脏偏向性表达、增强内体/溶酶体逃逸以及免疫刺激效应,从而减少额外功能组分带来的制剂复杂度。
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创新三:呈现内源性自佐剂效应。RNA-seq、免疫表型以及分子对接/模拟等结果共同提示,CIL/CISTS可激活与TLR4、TLR7相关的先天免疫信号并促进Th1偏向反应。(考虑到其中部分受体作用证据来自计算模拟与通路层面,本推文将其表述为“TLR4/TLR7相关免疫刺激潜力”,避免将其等同于已经完成直接受体激动剂药理学定量验证。)
关键实验数据
研究团队利用微流控平台制备了180种化学组成不同的LNP(5 种CIL×36种配方组合),先以粒径、PDI等指标筛选,再对 31个候选配方进一步进行RNA定量,最终选出5个代表性优选配方并命名为CISTS-A至CISTS-E。CISTS可包载EGFP(996 nt)、OVA(1416 nt)、Fluc(1921 nt)和 Cas9(4521 nt)mRNA;其粒径约100–200 nm、PDI<0.3、ζ电位约−1至 −10 mV,包封率约70%–100%。4 °C储存7 d后主要理化指标变化较小,提示良好的短期胶体稳定性。

图3. CISTS 的 LNP 配方筛选策略与组分比例设计

图4. CISTS-A–E的代表性TEM/cryo-EM形貌
体外实验涉及DC2.4、293T、B16F10和B16F10-OVA等细胞。EGFP mRNA用于观察蛋白表达;Cy5标记EGFP mRNA与 LysoTracker联合成像用于评价mRNA与酸性内体/溶酶体区室的空间关系。与MC3-LNP对照相比,CISTS处理后可见溶酶体信号减弱、胞内Cy5-mRNA与EGFP表达增强,时间序列成像结果与更有效的内体/溶酶体逃逸及胞质释放相一致。需要注意,这类共聚焦结果主要提供间接证据,若进一步开发平台,可结合Galectin-8 recruitment、胞质RNA定量或亚细胞分级等方法对内体逃逸进行定量验证。

图5. Fluc mRNA/CISTS体内给药与IVIS成像流程

图6. 静脉给药后主要器官Fluc生物发光及脾/肝表达比
( 显示CISTS的脾脏偏向性表达)
脾脏偏向性验证:研究者首先在BALB/c小鼠中比较皮下、肌肉和静脉给药;其中静脉注射Fluc mRNA/CISTS后6 h的IVIS成像显示明显的脾脏偏向性表达。与MC3、SM102、ALC0315及 SORT对照相比,CISTS组的脾/肝表达比显著提高;其中 CISTS-C、D、E的脾脏生物发光占总器官信号比例约为 66.69%、67.62%和54.71%。因此更准确的表述是“脾脏偏向性转染/表达”,而非已证明对某一脾脏细胞亚群的配体介导精准靶向。
免疫激活验证:CISTS/OVA mRNA可增强OVA特异性T细胞反应,并提高IFN-γ⁺ CD8⁺ T细胞等免疫指标;脾脏和肿瘤组织 RNA-seq显示抗原呈递、T/B细胞信号、IFN相关基因以及TLR 通路被激活,同时多种Th1相关细胞因子/趋化因子上调。分子对接进一步提示CIL与TLR4-MD2、以及喹啉头基与TLR7存在潜在相互作用,为自佐剂机制提供结构层面的计算支持。
抗肿瘤疗效验证:预防、治疗和肺转移三个场景得到验证
在B16F10-OVA小鼠黑色素瘤模型中:
预防性模型:在肿瘤接种前多次静脉免疫CISTS/OVA mRNA,随后接种B16F10-OVA。结果显示肿瘤生长明显受到抑制,提示系统能够建立有效的抗原特异性免疫记忆/预防性保护。
治疗性模型:先建立B16F10-OVA皮下瘤,并于第7、10、13、16天进行静脉治疗。CISTS/OVA mRNA明显延缓肿瘤进展并延长生存,研究随访最长至150天。
肺转移模型:尾静脉注射B16F10-OVA建立实验性肺转移模型,并于第3、6、9天给药。CISTS/OVA mRNA处理后肺部转移结节数量显著降低,显示其抗肿瘤作用并不局限于皮下实体瘤,提示其抗肿瘤效应可扩展至实验性肺转移场景。

图7. 治疗后肿瘤组织 H&E、Ki67 与 TUNEL 分析(用于评价坏死/组织学改变、增殖及凋亡)

图8. 肿瘤组织CD4⁺/CD8⁺ T细胞浸润的免疫荧光分析
安全性验证:在本研究给药条件下,多数组别小鼠体重总体稳定,主要脏器组织学未见明显异常,血液学及肝、肾、心肌相关生化指标总体未见显著毒性信号。现有数据支持CISTS-C/D/E等优选配方在该小鼠剂量与观察窗口下具有较好的初步耐受性,长期重复给药、细胞因子释放、补体激活及大动物安全性仍需进一步评价。
文章小结
本研究首次将氯喹骨架引入可电离脂质设计,通过模块化杂交策略构建了兼具脾脏靶向递送、高效内体逃逸和自佐剂活性的CISTS平台。该平台无需额外添加靶向配体或免疫佐剂,即可实现mRNA的脾脏偏向性递送并激活强效Th1型抗肿瘤免疫应答,在小鼠黑色素瘤预防、治疗及肺转移模型中均展现出显著疗效。多种 mRNA 载荷、体外细胞、器官成像、免疫分析以及三类肿瘤模型形成了较完整的证据链,证明该体系具备从材料设计向肿瘤 mRNA 疫苗应用延伸的潜力。CISTS为mRNA疗法的肝外靶向递送和肿瘤免疫治疗提供了一种“即插即用”式的全新解决方案,具有广阔的临床转化前景。但其临床转化仍需进一步解决跨物种器官趋向性、长期安全性、规模化工艺与机制定量验证等问题。
从实验试剂角度看,稳定、可重复的高质量mRNA是贯穿整套研究的重要基础。本文使用APExBIO提供的OVA(R1027)、Fluc(R1018)、Cas9(R1015)与EGFP mRNA(R1016、R1011),分别支撑抗原疫苗、体内分布、长片段载荷兼容性和体外表达等关键实验。




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