肿瘤来源的细胞外囊泡(tEVs)在肿瘤进展和治疗耐药中起关键作用,但现有方法难以解析其分泌动态和响应治疗的cargo变化。传统EV分析无法区分“新生EVs”与“pre-existing EVs”,缺乏时间分辨率和细胞特异性。近日,厦门大学化学化工学院化学生物学系等研究团队在《J Am Chem Soc》发表题为“Profiling Nascent Tumor Extracellular Vesicles via Metabolic Timestamping and Aptamer-Driven Specific Click Chemistry”的突破性研究文章,从如何在时间和细胞特异性层面,精准捕获并分析刺激后新分泌的 tEVs(如免疫治疗后的动态变化)角度进行了全新的探索。

【期刊】J Am Chem Soc
【IF值】14.4
【DOI】10.1021/jacs.5c01973
APExBIO团队为本文的实验研究提供了高品质的4%多聚甲醛产品:Paraformaldehyde (4%) (Cat. No:K4640)

|
货号 |
K4640 |
|
名字 |
|
|
描述 |
4%多聚甲醛的PBS溶液,可直接用于组织和细胞固定。 |
|
规格 |
500 mL |
|
目录价 |
¥120 |
01
研究背景
肿瘤来源的细胞外囊泡(tEVs)在肿瘤进展和治疗耐药中起关键作用,但其分泌动态和响应治疗的cargo变化难以解析。传统EV分析方法(如超速离心、亲和富集)仅能检测总EVs,无法区分新生EVs与pre-existing EVs,且缺乏细胞特异性(如肿瘤细胞靶向)。代谢标记法虽能标记新生EVs,但无法排除非肿瘤细胞背景干扰;传统点击化学特异性不足。在免疫治疗(如PD-L1抗体)中,肿瘤可能通过EV分泌双向适应策略(如同时促进免疫抑制与敏感通路),但现有技术无法实时监测新生tEVs的动态变化及分子特征,亟需开发兼具时间分辨和细胞特异性的EV分析工具。

Scheme免疫治疗期间新分泌的肿瘤细胞外小泡捕获及蛋白质组分析的STAMP策略示意图
02
研究工作
为验证适体驱动的点击化学反应是否优于直接点击化学,解析其动力学与热力学特性,使用SYL3C适体-DBCO(靶向EpCAM)和5T-DBCO(非靶向对照),与代谢标记的MGL A375 EVs反应,通过流式细胞术检测结合曲线、荧光强度及SSB竞争实验。结果发现,适体驱动反应呈双阶段动力学,结合亲和力(K₁=6.2 nM)和反应速率(k₂/K₁)显著高于直接点击,且仅在EpCAM+且叠氮标记的EVs上特异性结合。

Fig.1 适体辅助特异性点击化学结合机制的表征
为验证微流控芯片对标记EVs的捕获效率与选择性,使用了体外制备MGL A375/U251 EVs,用生物素-适体-DBCO标记后,通过链霉亲和素修饰的人字形芯片捕获,荧光酶免疫分析及电镜观察形态。结果发现,芯片可高效捕获EpCAM+叠氮标记EVs(荧光强度比非靶向EVs高131-227倍),且释放后的EVs保持完整,适合蛋白质组分析。

Fig.2 利用体外甘露糖受体C型1进行标记物特异性细胞外囊泡的微流控选择性分离
为在肿瘤小鼠模型中验证STAMP对新生tEVs的检测能力及与肿瘤进展的相关性,使用给4T1肿瘤小鼠注射Ac₄ManNAz和PD-L1抗体,检测血浆中新生EpCAM+CD63+EVs水平,分析其与肿瘤体积的相关性。结果发现,新生EpCAM+EVs水平与肿瘤体积呈强正相关(R²=0.96),而总EpCAM+EVs在治疗组中失去相关性,证明新生EVs是更优生物标志物。

Fig.3 使用体内甘露糖结合凝集素(MGL)检测肿瘤细胞外囊泡(tEVs)
为鉴定PD-L1抗体治疗后新生tEVs的差异表达蛋白及功能通路,通过LC-MS/MS对比治疗与未治疗组新生EpCAM+EVs的蛋白组,GO富集分析及HSP70表达验证。结果发现,治疗后补体系统蛋白(如C3)和HSP70显著上调,HSP70+EVs水平与肿瘤体积变化呈正相关,提示肿瘤的双重免疫适应机制。

Fig.4 新生肿瘤细胞外小囊泡中蛋白质生物标志物的鉴定
为验证HSP70在EVs表面的抗肿瘤功能,体外将HSP70蛋白吸附至4T1 EVs表面,检测对肿瘤细胞增殖的影响,并在小鼠模型中观察肿瘤生长及免疫细胞浸润。结果发现,HSP70涂层EVs显著抑制肿瘤生长,促进凋亡(TUNEL+细胞增加)和CD8+ T细胞浸润,证明其增强抗肿瘤免疫的潜力。

Fig.5 4T1细胞外泌体上的热休克蛋白70包被可促进抗肿瘤免疫
03
研究结论
本文通过STAMP技术(代谢标记结合适配体驱动点击化学)实现了对新生肿瘤细胞外囊泡(tEVs)的时空特异性捕获与动态解析,发现新生EpCAM⁺CD63⁺ tEVs水平与肿瘤体积呈强正相关(R²=0.96),而总EVs在治疗组中失去相关性,证实其作为实时治疗响应标志物的潜力。蛋白质组学分析揭示,PD-L1抗体治疗后,新生tEVs同时上调补体系统蛋白(如C3,促免疫抑制)和HSP70(促免疫激活),揭示肿瘤通过EVs分泌的双向免疫适应机制。功能实验表明,HSP70涂层EVs通过促进CD8⁺ T细胞浸润和抑制PD-L1表达,显著抑制肿瘤生长。
04
精彩看点
技术突破
首次整合代谢糖工程(时间戳)与适配体驱动点击化学(空间靶向),解决传统EV分析的时空混杂难题,检测限低至7.045 ng/μL。
机制创新
发现肿瘤通过新生tEVs同时释放免疫抑制因子(补体系统)和激活因子(HSP70),突破“EVs仅促耐药”的认知,揭示其动态平衡策略。
转化价值
新生EpCAM⁺EVs在治疗组中保持与肿瘤负荷的强相关性,优于总EVs;HSP70涂层EVs的体内抑瘤效果为工程化EV疗法提供实验基础。
05
后续可能研究方向
技术优化
开发多适体组合(如EpCAM+PD-L1)覆盖更多肿瘤类型,集成单细胞EV分析解析亚克隆特异性EVs。
机制深挖
明确HSP70在EVs中的分泌调控通路(如是否依赖特定膜转运蛋白),探索补体系统蛋白(如C3)的免疫抑制靶点。
转化应用
开展临床队列研究验证新生EpCAM⁺/HSP70⁺EVs作为免疫治疗响应预测标志物的效能,开发HSP70-EV工程化制剂联合PD-L1抗体进行协同治疗。
扩展场景
应用STAMP分析化疗/靶向治疗后的新生EVs,结合空间转录组定位EVs来源的肿瘤细胞亚群(如干细胞)。
06
参考文献
J Am Chem Soc. 2025 Mar 26;147(12):10737-10749.

07
产品推荐
(点击产品名称可跳转至详情页)



沪公网安备 31011002003500