
背景
全球变暖导致极端高温频发,严重威胁水稻等作物的产量。植物在高温下会经历细胞膜脂质的快速重塑,例如磷脂酸(PA)在数分钟内积累。然而,这种脂质变化究竟是被动热损伤的结果,还是植物主动感知热信号的机制,长期未知。此外,G蛋白与第二信使cAMP在动植物胁迫响应中均扮演重要角色,但在植物热感知中,膜脂信号、G蛋白信号、cAMP信号如何协同,以及物理热信号如何转化为生化信号并传递至细胞核,一直是未解之谜。
近日,中国科学院上海植物生理生态研究所(中国科学院分子植物科学卓越创新中心)团队在《Cell》发文,首次揭示“DGK7→PA→MdPDE1入核→降解cAMP→耐热基因”完整级联,并阐明TT2负调控机制。田间试验证实,模块化基因工程(如过表达DGK7或敲除TT2)可在不影响正常产量的前提下,大幅提升水稻高温产量,为耐热作物定制化设计提供了新策略

引用产品
使用参数如下:
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Method |
Mobility shift assays for phosphorylation |
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Sample |
IP-enriched DGK7-GFP |
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Gel |
SDS-PAGE |
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Phosbind acrylamide |
50 μM |
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Mn2+ |
100 μM MnCl2 |
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Antibody |
anti-GFP antibody(1:5000) |

研究思路

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核心实验数据(正文)
研究通过多组学分析,在热敏感与耐热水稻中筛选出热应激上调、恢复期下调的479个基因,结合差异表达基因和KEGG脂质代谢通路富集,最终锁定DGK7等4个候选基因。结论:DGK7可能是G蛋白与膜脂热感知之间的桥梁。

(A) 筛选获得479个热应激上调、恢复期下调的基因;
(B) HJX与NIL-TT2HPS32对比鉴定出2505个差异表达基因;
(C) 对目标差异基因集开展KEGG通路富集分析;
(D) 结合脂质代谢通路筛选出DGK7等4个候选基因。
通过敲除、过表达和抑制剂处理验证DGK7功能。敲除株系耐热性显著下降,过表达株系耐热性升高;抑制剂R59022剂量依赖性降低耐热性。在TT2缺失背景下敲除DGK7消除耐热性,过表达则增强,而共过表达TT2抑制DGK7的增效。结论:DGK7是水稻耐热性所必需且充分的关键基因,TT2是其上游负调控因子。

(A-B) 高温处理后,检测DGK7敲除与过表达株系的植株存活率;
(C) 采用抑制剂R59022处理,检测其对水稻耐热性的影响;
(D-F) TT2 缺失背景下不同基因型植株高温胁迫后恢复表型观察。
通过BiFC、SFLC和Co-IP验证蛋白互作。BiFC显示DGK7与TT2或RGB1在质膜上共定位;SFLC证实互作特异性;Co-IP确认在原生质体和转基因水稻中DGK7可被TT2或RGB1共沉淀。结论:G蛋白(TT2/RGB1)在细胞膜上直接调控DGK7。

(A) 原生质体中BiFC实验验证蛋白互作与质膜共定位情况;
(B) 利用SFLC实验验证DGK7与TT2、RGB1二者间的相互作用;
(C) 原生质体共表达体系中Co-IP验证蛋白互作;
(D) 转基因水稻材料体内验证TT2与DGK7的互作关系。
脂质组学显示DGK7过表达降低DAG、升高PA,TT2共过表达逆转该变化。质谱鉴定Ser477为磷酸化位点,S477A阻断磷酸化,S477D模拟磷酸化。体外和体内实验表明S477D产PA更多,S477A更少。Phos-tag显示TT2共表达时DGK7磷酸化条带减少。结论:TT2通过促进Ser477去磷酸化抑制DGK7活性。

(A-B) 脂质组学检测植株中DAG与PA物质含量变化;
(C) 质谱鉴定DGK7蛋白的磷酸化位点;
(D) 构建S477A、S477D两种DGK7位点突变蛋白;
(E-F) 检测不同突变体的PA合成量;
(G-H) Phos-tag胶检测DGK7蛋白磷酸化水平变化。
体外PDE活性测定显示MdPDE1具有cAMP→AMP活性,依赖Mg²⁺/Mn²⁺,H28A突变消除活性。体内cAMP检测和耐热性表型分析表明,MdPDE1敲除株系cAMP升高、耐热性下降,过表达则相反。结论:MdPDE1通过降低cAMP水平增强水稻耐热性。

(A) 完成MdPDE1蛋白突变位点设计
(B-C) 采用LC-MS/MS开展MdPDE1体外PDE活性检测
(D) 测定MdPDE1相关酶动力学参数
(E) 对比不同突变体的PDE活性差异
(F-G) 检测转基因株系体内cAMP含量并观察耐热相关表型
AlphaFold预测MdPDE1含有KK-K和KR-KR两个PA结合基序。PLO、Pull-down和MST实验显示,突变这两个基序显著降低PA结合亲和力。共聚焦显微镜观察表明,热应激下MdPDE1迅速入核,PA结合突变体无法入核;DGK抑制剂或TT2抑制入核,DGK7促进入核。PA结合突变体PDE活性下降。结论:PA结合激活MdPDE1并驱动其入核,DGK7促进、TT2抑制该过程。

(A) AlphaFold预测MdPDE1蛋白三维结构并标注 PA 结合基序;
(B-E) 采用PLO、Pull-down及MST实验检测突变基序对PA结合能力的影响;
(F-G) 显微镜观察正常及热胁迫条件下MdPDE1及其突变体的亚细胞定位;
(H-K) 观察抑制剂、相关基因共表达处理后MdPDE1的定位变化;
(L-M) 检测PA结合突变体PDE活性及不同遗传背景下植株内源cAMP 含量。
田间小区试验在灌浆期覆膜高温处理31天。DGK7或MdPDE1过表达株系在高温下叶片更绿、稻穗更长、籽粒更饱满。产量数据显示,DGK7过表达使单株产量提高66.72%,TT2缺失背景下过表达增产108.67%;MdPDE1过表达使单株产量提高77.46%,小区产量提高64.91%。结论:靶向DGK7-TT2-MdPDE1模块可在不影响正常产量的前提下大幅提高水稻高温单产(60%-108%),为耐热作物育种提供了可直接应用的基因资源和设计策略。

(A) 灌浆期覆膜温室高温处理的田间试验示意图;
(B-C, E-F) 田间长期高温处理后植株形态、穗部及籽粒性状观察;
(D) 不同遗传背景下 DGK7 过表达株系的单株产量统计;
(G) MdPDE1 过表达株系的单株产量与小区产量测定;
(H) 水稻高温响应的 DGK7-TT2-MdPDE1 分子机制模式图。
结论
该研究首次揭示植物热感知分步解码机制:DGK7将热信号转化为PA,PA激活MdPDE1入核降解cAMP,启动耐热基因表达;G蛋白TT2负调控该通路。田间试验证明,操纵该模块可使高温下水稻单产提高60%-108%,为定制化耐热作物育种提供了基因资源和设计策略。
研究亮点
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首次揭示完整的分步热解码机制:从细胞膜脂质信号到核内cAMP信号的全链条。
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发现三个核心功能蛋白:DGK7、MdPDE1、TT2,分别负责信号产生、感知传递和负调控。
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阐明PA作为“信使”激活MdPDE1,并促使其进入细胞核降解cAMP。
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田间试验验证:通过基因工程改造该模块,可显著提高水稻在高温下的产量。
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提出“定制化耐热作物”设计策略:根据需求选择不同基因组合
不足之处(文中)
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上游激酶未知:催化DGK7的Ser477磷酸化的上游激酶尚未鉴定,TT2是否通过物理阻断激酶接近来抑制磷酸化也不清楚。
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PA来源难以区分:目前无法区分DGK7来源与PLD来源的PA在热响应中的功能是否冗余。
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DAG功能未验证:热应激下DAG大量积累,但其是否作为独立信号分子直接发挥作用尚未验证。
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缺乏实时检测工具:缺乏能够在活细胞中实时追踪热应激下核内cAMP瞬时动态变化的检测工具。
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cAMP下游机制不明:cAMP调控热响应基因转录的具体分子机制未知,植物中是否存在类似动物PKA的cAMP依赖型激酶尚未鉴定
参考文献
Kan Y, Mu XR, Qu F, et al. A stepwise decoding mechanism for heat sensing in plants connects lipid remodeling to a nuclear signaling cascade. Cell. 2025;188(26):7378-7396.
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